En las XI Jornadas del GEP-ISFG, en Madrid, ha sido presentada una propuesta de realización de un trabajo de colaboración entre laboratorios del grupo con el objetivo de evaluar un multiplex para estudio de X-STRs. Este trabajo será coordinado por el grupo de cromosomas sexuales del GEP-ISFG en colaboración con la Unidad de Medicina Legal del Laboratorio de Genética Forense de la Universidad de Cantabria y con el Instituto de Medicina Legal de Santiago de Compostela.
Los laboratorios interesados en participar deben inscribirse enviando un-mail a Leonor Gusmao ([email protected]). Para participar en este trabajo, los laboratorios tendrán que pagar una inscripción de 50 euros para soportar gastos para la compra y envío de primers y muestras. Para información acerca de cómo realizar el pago por favor consulta la página (http://www.gep-isfg.org/es/control-calidad/formas-pago.html) y, en caso de duda, contacta con el tesorero, Iñaki Yurrebaso ([email protected]).
Fecha limite para inscripción en el ejercicio: 15 de Noviembre de 2006
Se enviarán 2 muestras (manchas de sangre en papel FTA) y una alícuota de primers para la amplificación de los 10 STRs incluidos en el multiplex a todos los laboratorios inscritos.
Los resultados obtenidos para las 2 muestras enviadas, mediante la utilización del multiplex (cuyos protocolos se adjuntan al final de este documento), deben ser enviados por correo a Leonor Gusmão ([email protected]).
Fecha limite para envío de resultados: 31 de Enero de 2006
Protocolo de amplificación X-STR DECAPLEX
X-STRs: DXS8378, DXS9898, DXS7133, GATA31E08, GATA172D05, DXS7423, DXS6809, DXS7132, DXS9902, DXS6789
Tabla 1. Primers: secuencia y marcaje
Locus | Secuencia de los primer (5'-3') | Ref. |
DXS8378 | 6-FAM TTAGGCAACCCGGTGGTCC ACAAGAACGAAACTCCAACTC | [1] |
DXS9898 | 6-FAM CGAGCACACCTACAAAAGCTG TAGGCTCACCTCACTGAGCA | New |
DXS7133 | 6-FAM CACTTCCAAAAGGGGAAAAA ACTTGTACTTGGTGGGAGGAA | New |
GATA31E08 | 6-FAM GCAAGGGGAGAAGGCTAGAA TCAGCTGACAGAGCACAGAGA | New |
GATA172D05 | VIC TAGTGGTGATGGTTGCACAG ATAATTGAAAGCCCGGATTC | [1] |
DXS7423 | VIC GTCTTCCTGTCATCTCCCAAC TAGCTTAGCGCCTGGCACATA | [1] |
DXS6809 | VIC TCCATCTTTCTCTGAACCTTCC TGCTTTAGGCTGATGTGAGG | New |
DXS7132 | NED TCCCCTCTCATCTATCTGACTG CACTCCTGGTGCCAAACTCT | New |
DXS9902 | NED CTGGGTGAAGAGAAGCAGGA GGCAATACACATTCATATCAGGA | New |
DXS6789 | NED CTTCATTATGTGCTGGGGTAAA ACCTCGTGATCATGTAAGTTGG | New |
[1] Edelmann et al. Forensic Sci Int 129: 99-103 (2002)
Reactivos PCR:
- 10X Primer Mix (incluye todos los primers a una concentración de 2µM. En la Tabla 1 esta indicada la secuencia y marcaje de los primers)
- QIAGEN Multiplex PCR kit (http://www.qiagen.com)
PCR (Qiagen amplification kit)
Volumen por muestra | ||
2x Qiagen Multiplex PCR Master Mix | 5 µl | |
10x Primer mix | 1 µl | |
H2O | 3,5 µl | |
9,5 µl |
+ 0.5 µl ADN (1 ng/µl) | |
10 µl volumen final |
Condiciones cíclicas de la PCR
Desnaturalización inicial |
95 ºC |
15 min |
94 ºC |
30 sec | |
10 X |
60 ºC |
90 sec |
72 ºC |
60 sec | |
94 ºC |
30 sec | |
20 X |
58 ºC |
90 sec |
72 ºC |
60 sec | |
Extensión final |
60 ºC |
60 min |
Post PCR
Size standard LIZ500; Filtro G5
Size standard ROX500; Filtro D
Muestras de referencia:
Locus | 9947A | 9948 | NA3657 | Referencia |
DXS8378 | 10-11 | 11 | 12 | Szibor et al. FSI 138 (2003) 37-43 |
DXS9898 | 12-15 | 13 | Gomes et al. IJLM (enviado) | |
DXS7133 | 9-10 | 11 | 9 | Szibor et al. FSI 138 (2003) 37-43 |
GATA31E08 | 11 | 10 | Shin et al. FSI 147 (2005) 35-41 | |
GATA172D05 | 10 | 6 | 9 | Szibor et al. FSI 138 (2003) 37-43 |
DXS7423 | 14-15 | 14 | 13 | Szibor et al. FSI 138 (2003) 37-43 |
DXS6809 | 31-34 | 31 | 29 | Szibor et al. FSI 138 (2003) 37-43 |
DXS7132 | 12 | 13 | 12 | Szibor et al. FSI 138 (2003) 37-43 |
DXS9902 | 11 | 12 | 12 | Szibor et al. FSI 138 (2003) 37-43 |
DXS6789 | 21-22 | 20 | 23 | Szibor et al. FSI 138 (2003) 37-43 |